• Facebook
  • linkedin
  • Youtube

1. Alapvető ismeretek (ha a kísérleti részt szeretné látni, kérjük, tegye át közvetlenül a második részbe)

A hagyományos PCR derivált reakciójaként a Real Time PCR elsősorban a PCR amplifikációs reakció egyes ciklusaiban az amplifikációs termék mennyiségének változását figyeli valós időben a fluoreszcencia jel változásán keresztül, és kvantitatívan elemzi a kiindulási templátot a ct érték és a standard görbe kapcsolatán keresztül.

Az RT-PCR specifikus adatai a következőkalapvonal, fluoreszcencia küszöbésCt érték.

alapvonal: A 3-15. ciklus fluoreszcencia értéke az alapvonal (alapvonal), amelyet a mérés alkalmi hibája okoz.
Küszöb (küszöb): Az amplifikációs görbe exponenciális növekedési tartományának megfelelő pozíciójában beállított fluoreszcencia kimutatási határértékre vonatkozik, amely általában az alapvonal szórásának tízszerese.
CT érték: A PCR-ciklusok száma, amikor a fluoreszcencia értéke az egyes reakciócsövekben eléri a küszöbértéket.
A Ct érték fordítottan arányos a kezdeti sablon mennyiségével.

 Néhány tapasztalat az siRNA in1-ről

Az RT-PCR általános jelölési módszerei:

módszer előny hiányosság hatály
SYBR zöldⅠ Széleskörű alkalmazhatóság, érzékeny, olcsó és kényelmes A primer követelmények magasak, hajlamosak a nem specifikus sávokra Alkalmas különféle célgének kvantitatív elemzésére, génexpresszió kutatására, valamint transzgenikus rekombináns állatok és növények kutatására.
TaqMan Jó specifitás és nagy ismételhetőség Az ár magas, és csak meghatározott célokra alkalmas. Kórokozók kimutatása, gyógyszerrezisztencia génkutatás, gyógyszerhatékonyság felmérés, genetikai betegségek diagnosztikája.
molekuláris jeladó Magas specificitás, fluoreszcencia, alacsony háttér Az ára magas, csak meghatározott célra alkalmas, a tervezés nehézkes, az ára magas. Specifikus génanalízis, SNP analízis

Néhány tapasztalat az siRNA in2-ről Néhány tapasztalat az siRNA in3-ról

2. Kísérleti lépések

2.1 A kísérleti csoportosításról- több kútnak kell lennie a csoportban, és biológiai ismétlődéseknek kell lenniük.

Üres vezérlő A sejtek növekedési állapotának kimutatására használják kísérletekben
Negatív kontroll siRNS (nem specifikus siRNS szekvencia) Mutassa be az RNSi hatás specifitását.Az siRNS nem specifikus stresszválaszt indukálhat 200 nM koncentrációban.
Transzfekciós reagens kontroll Ki kell zárni a transzfekciós reagens sejtekre gyakorolt ​​toxicitását vagy a célgén expressziójára gyakorolt ​​hatást
siRNS a célgén ellen Döntse le a célgén expresszióját
⑤ (nem kötelező) pozitív siRNS Kísérleti rendszer- és működési problémák hibaelhárítására szolgál
⑥ (nem kötelező) Fluoreszcens kontroll siRNS A sejttranszfekció hatékonysága mikroszkóppal figyelhető meg

2.2 Az alapozó tervezés elvei

Felerősített fragmensméret Lehetőleg 100-150 bp
Alapozó hossza 18-25 bp
GC tartalom 30-70%, lehetőleg 45-55%
Tm érték 58-60 ℃
Sorrend Kerülje a folyamatos T/C-t;A/G folyamatos
3 végsorozat Kerülje a GC gazdag vagy AT gazdag;a terminális alap előnyösen G vagy C;legjobb elkerülni a T
Komplementaritás Kerülje el a 3-nál több bázisból álló komplementer szekvenciákat a primeren belül vagy két primer között
Specifikusság Használja a blast keresést a primer specifikusságának megerősítéséhez

①A SiRNS fajspecifikus, és a különböző fajok szekvenciái eltérőek lesznek.

②A SiRNS fagyasztva szárított porba van csomagolva, amely szobahőmérsékleten 2-4 hétig stabilan tárolható.

2.3 Eszközök vagy reagensek, amelyeket előre el kell készíteni

Primer (belső referencia) Köztük kettő előre és hátra
Primerek (célgén) Köztük kettő előre és hátra
Cél Si RNS (3 csík) Általában a vállalat 3 csíkot szintetizál, majd RT-PCR segítségével kiválaszt egyet a három közül.
Transzfekciós készlet Lipo2000 stb.
RNA Rapid Extraction Kit Transzfekció utáni RNS extrakcióhoz
Rapid Reverse Transcription Kit cDNS szintézishez
PCR amplifikációs készlet 2×Super SYBR zöld
qPCR Master Mix

2.4 Ami a konkrét kísérleti lépések során figyelmet érdemlő kérdéseket illeti:

①siRNS transzfekciós folyamat

1. A lemezezéshez választhat 24-lyukú lemezt, 12-lyukú lemezt vagy 6-lyukú lemezt (a javasolt átlagos RNS-koncentráció egy 24-lyukú lemez minden egyes lyukájában körülbelül 100-300 ng/uL), és a sejtek optimális transzfekciós sűrűsége körülbelül 60-80%

2. A transzfekció lépései és a speciális követelmények szigorúan összhangban vannak az utasításokkal.

3. A transzfekciót követően 24-72 órán belül mintákat lehet gyűjteni mRNS kimutatáshoz (RT-PCR) vagy fehérje kimutatáshoz 48-96 órán belül (WB)

② RNS extrakciós folyamat

1. Akadályozza meg az exogén enzimekkel való szennyeződést.Ez főleg a maszk és kesztyű szigorú viselését foglalja magában;sterilizált pipettahegyek és EP-csövek használata;a kísérletben használt víznek RNáz-mentesnek kell lennie.

2. Javasoljuk a gyors extrakciós készletben javasolt kétszeri elkészítését, ami valóban javítja a tisztaságot és a hozamot.

3. A hulladékfolyadék nem érheti az RNS oszlopot.

③ RNS mennyiségi meghatározása

Az RNS extrahálása után közvetlenül Nanodrop segítségével mennyiségileg meghatározható, és a minimális leolvasás akár 10 ng/ul is lehet.

④ Fordított átírási folyamat

1. Az RT-qPCR nagy érzékenysége miatt minden mintához legalább 3 párhuzamos mérőhelyet kell készíteni, nehogy a következő Ct túlságosan eltérő legyen, vagy az SD ne legyen túl nagy a statisztikai elemzéshez.

2. Ne fagyassza le és ne olvassa fel ismételten a Master mixet.

3. Minden csövet/lyukat új hegyre kell cserélni!Ne használja folyamatosan ugyanazt a pipettahegyet a minták hozzáadásához!

4. A minta hozzáadása után a 96 lyukú lemezre rögzített filmet lemezzel kell simítani.A legjobb, ha a gépre helyezés előtt centrifugálja, hogy a cső falán lévő folyadék le tudjon folyni és eltávolítsa a légbuborékokat.

⑤ Közös görbe elemzés

Nincs logaritmikus növekedési periódus Lehetséges, hogy magas a sablonkoncentráció
Nincs CT érték Helytelen lépések a fluoreszcens jelek észleléséhez;
primerek vagy próbák lebomlása – integritása PAGE elektroforézissel kimutatható;
elégtelen mennyiségű sablon;
a sablonok lebomlása – a szennyeződések bejutásának és az ismételt fagyasztás és felengedés elkerülése a minta-előkészítés során;
Ct>38 Alacsony erősítési hatékonyság;A PCR termék túl hosszú;különböző reakciókomponensek lebomlanak
Lineáris erősítési görbe A szondák részlegesen leépülhetnek ismételt fagyasztási-olvadási ciklusok vagy hosszan tartó fény hatására
Különösen nagy a különbség a duplikált lyukak között A reakcióoldat nem olvad meg teljesen, vagy a reakcióoldat nem keveredik össze;a PCR műszer termálfürdője fluoreszcens anyagokkal szennyezett

2.5 Az adatelemzésről

A qPCR adatelemzése relatív és abszolút kvantifikációra osztható.Például a kezelt csoport sejtjei összehasonlítva a kontrollcsoport sejtjeivel,

Hányszor változik az X gén mRNS-e, ez relatív mennyiségi meghatározás;bizonyos számú sejtben az X gén mRNS-e

Hány példány van, ez abszolút számszerűsítés.Általában a legtöbbet a relatív mennyiségi módszert alkalmazzuk a laboratóriumban.Általában,a 2-ΔΔct módszerkísérletekben használják a legtöbbet, ezért itt csak ezt a módszert mutatjuk be részletesen.

2-ΔΔct módszer: A kapott eredmény a kísérleti csoportban a célgén expressziójának különbsége a kontrollcsoportban lévő célgénhez viszonyítva.Előírás, hogy mind a célgén, mind a belső referenciagén amplifikációs hatékonysága közel 100%, és a relatív eltérés nem haladhatja meg az 5%-ot.

A számítási módszer a következő:

Δct kontrollcsoport = a célgén ct értéke a kontrollcsoportban – a belső referenciagén ct értéke a kontrollcsoportban

Δct kísérleti csoport = a célgén ct értéke a kísérleti csoportban – a belső referenciagén ct értéke a kísérleti csoportban

ΔΔct=Δct kísérleti csoport-Δct kontrollcsoport

Végül számítsa ki a kifejezési szint különbségének többszörösét:

Fold=2-ΔΔct módosítása (az excel függvénynek a POWER felel meg)

Kapcsolódó termékek:

Cell Direct RT-qPCR készlet
Néhány tapasztalat az siRNA in4-ről


Feladás időpontja: 2023. május 20